Zeiss

Конфокальный лазерный сканирующий микроскоп с уникальной оптической схемой и системой детектирования, которые позволяют получать оптические срезы с максимальной эффективностью. Вы можете работать с мультиканальной флуоресценцией вплоть до десяти красителей и использовать непрерывную спектральную детекцию во всем видимом диапазоне длин волн.

LSM 710 на инвертированном штативе микроскопа Axio Observe Z1 — это непревзойденный конфокальный микроскоп для клеточной биологии и биологии развития. Совместно с прямым штативом AxioImager или AxioEmainer — LSM 710 превращается в инструмент для работы в нейробиологии, физиологии и изучении биовзаимодействий в самом широком спектре экспериментов.

Оптическая схема предполагает использование до восьми лазерных портов и любую комбинацию лазерных линий от близкого УФ спектра до ИК. 34-канальный модуль детекции QUASAR позволяет оптимальную стратегию захвата для различных спектров излучения, без привязки к фильтрам и дихроичным зеркалам. Вы всегда можете направить любую часть спектра сигнала на любой выбранный Вами детектор.

Спектральное сканирование предполагает эксперименты с высоким разрешением и обнаружением до 10 каналов одновременно.

В сканирующем модуле LSM 710 используется передовое техническое решение: возвратный контур спектральной переработки (Spectral Recycling Loop), обеспечивающий усиление сигнала за счет многократного повторного пропускания через спектральную решетку всех неразделенных частей флуоресцентного сигнала. Коррекция плоскости поляризации части флуоресценции увеличивает суммарный эмиссионный сигнал в среднем на 15 −17 %!

Модификация LSM 710 NLO — это лазерный сканирующий микроскоп, оснащенный фемтосекундным мультифотонным лазером, генерирующим излучение высокой плотности в инфракрасной области 680-1080 нм. Благодаря свойствам такого лазера мы можем проникать на глубину до 500 мкм, при этом возбуждение происходит только внутри фокального микрообъема, менее 0,1 мкм3, что позволяет бережно воздействовать на живую ткань.

Технические характеристики:

Сканирующий модуль с двумя, тремя одноканальными высокочувствительными детекторами или с 34-х канальным спектральным детектором для быстрого параллельного захвата полного эмиссионного профиля;Произвольный выбор спектрального диапазона регистрации сигнала с разрешением до 3 нм (последовательное сканирование) и 10 нм (параллельное сканирование);Детектор проходящего света;Независимых гальванометрических сканирующих зеркала Два;Сканирующее разрешение от 4×1 до 6144×6144 пикселей;Скорость сканирования - 14×2 скоростей сканирования;5 рамок/сек при 512×512 пикселей;0.38 мсек/линию из 512 пикселей (2619 линий/сек);Сканирующее увеличение ZOOM от 0.6х до 40х с шагом 0.1х;Свободное вращение на 360° сканирующей рамки;Конфокальный pinhole - моторизованный конфокальный pinhole плавной регулировкой диаметра и координат;Разрядность данных — 8, 12 или 16 бит;Лазерные линии — 355, 405, 458, 488, 514, 543, 561, 594, 633;перестраиваемый 488-640;Варианты штативов — инвертированный AxioObserver;прямой AxioImager;прямой с фиксированным столиком AxioExaminer.

Развитие генной инженерии, протеомики, биотехнологии, современной фармацевтики и биомедицины способствовало быстрому внедрению новых методов конфокальной микроскопии, и в настоящее время они широко используются в клеточной биологии.

Конфокальную флуоресцентную микроскопию можно рассматривать как разновидность традиционной флуоресцентной микроскопии, которая позволяет исследовать внутреннюю микроструктуру клеток, причем не только фиксированных, но и живых, идентифицировать микроорганизмы, структуры клетки и отдельные молекулы, наблюдать динамические процессы в клетках. Конфокальная флуоресцентная микроскопия в дополнение к этому обеспечила возможность трехмерного субмикронного разрешения объекта и существенно расширила возможность неразрушающего анализа прозрачных образцов. Повышение разрешающей способности достигается благодаря использованию в конфокальных микроскопах лазеров в качестве источников света и конфокальной диафрагмы для фильтрации внефокусной флуоресценции. Преимущество лазеров по сравнению с ртутными или ксеноновыми лампами заключается в монохроматичности и высокой параллельности испускаемого пучка света. Эти свойства лазерного излучения обеспечивают более эффективную работу оптической системы микроскопа, уменьшают число бликов, улучшают точность фокусировки пучка света. На образце лазер освещает не все поле зрения, как в ламповом флуоресцентном микроскопе, а фокусируется в точку. Конечно, при этом лазерный луч возбуждает флуоресценцию как в точке фокуса, так и во всех слоях образца, через которые проходит. И если эта внефокусная флуоресценция, излучаемая слоями, расположенными выше и ниже фокальной плоскости, регистрируется вместе с основным сигналом из фокуса объектива, это ухудшает разрешение оптической системы. Избавиться от внефокусной флуоресценции позволяет конфокальная диафрагма. Изменяя диаметр конфокальной диафрагмы, можно определять толщину оптического слоя вблизи фокуса лазерного луча, поэтому флуоресценция, испускаемая выше и ниже фокуса, оказывается дефокусированной на конфокальной диафрагме и не регистрируется. Благодаря этому конфокальная микроскопия обеспечивает улучшенное разрешение, в первую очередь вдоль оси Z.

Современная конфокальная микроскопия позволяет решать три основные задачи: изучение тонкой структуры клетки, колоколизации (пространственного взаиморасположения) в клетке двух или более веществ, а так же исследование динамических процессов, протекающих в живых клетках.

Благодаря улучшенному разрешению, особенно повышенному разрешению по оси Z, и возможности создавать серии «оптических» срезов, конфокальный микроскоп позволяет исследовать тонкую структуру объекта в трехмерном пространстве. Специальные программы позволяют создать из серии оптических срезов объемное изображение объекта (3D) и как бы рассматривать его под разными углами зрения, что может дать ценную информацию о форме клеток, цитоскелете, структуре ядра, хромосомах и даже локализации в них отдельных генов, а так же о взаиморасположении этих элементов.

Использование мультиспектрального (с несколькими флуорохромами) режима работы лазерного сканирующего конфокального микроскопа позволяет исследовать колоколизацию (пространственное взаиморасположение) в клетке двух или более разных веществ, например, белков, помеченных разными флуоресцентными красителями. Исследуя такие препараты в обычном флуоресцентном микроскопе, нельзя с уверенностью утверждать, находятся эти вещества рядом или одно под другим. С помощью метода оптических срезов и дальнейшей 3D-реконструкции объекта можно воссоздать объемное распределение веществ. Мультиспектральный режим так же позволяет проводить на конфокальном микроскопе исследования методом FISH.

Возможность получать временные серии изображений с высоким пространственным разрешением позволяет исследовать изменения, происходящие в клетках и их структурах во времени (4D реконструкция). Кроме того, благодаря наличию лазеров и системы сканирования можно осуществлять не только регистрацию временных изменений, но и осуществлять воздействие на клеточные структуры лазерным излучением с одновременным наблюдением протекающих процессов.

Новые методы лазерной сканирующей конфокальной микроскопии получили широкое распространение в фундаментальных науках, а также все шире применяются в практических исследованиях и диагностической медицине.

Методы конфокальной микроскопии позволяют выявить способность веществ накапливаться в цитоплазме, ядре или других структурах клетки, зарегистрировать образование метаболитов, измерить кинетику накопления и метаболизма веществ в клетке, скорость выведения веществ из клетки, сравнить интенсивность метаболизма в различных клеточных линиях и в различных условиях. Эти методы все шире применяются в исследованиях механизмов действия как канцерогенов, так и лекарственных препаратов и противоопухолевых соединений, позволяют рассчитывать их эффективные концентрации.

Анализ интенсивности и формы спектров собственной флуоресценции позволяет распознавать нормальные и воспаленные клетки, и такой метод, в частности, предложен в качестве нового способа ранней диагностики шейки матки.

Подобрав комбинацию фильтров для нескольких типов собственной флуоресценции, возможно без проведения гистохимического окрашивания и трудоемкого получения и исследования множества срезов различать злокачественные и нормальные тканевые структуры в биопсийных пробах лимфоузлов пациентов с лимфоаденопатией различного происхождения.

Методы конфокальной микроскопии широко применяются в эмбриологии и гидробиологии, ботанике, зоологии при изучении структуры гамет, развития и формирования организмов.

Конфокальная микроскопия постоянно развивается, и в практику внедряются все новые методы исследований для изучения механизмов функционирования организмов на клеточном, субклеточном и молекулярном уровнях, которые с каждым днем становятся все более востребованными в прикладных исследованиях и диагностике. Появление персонального конфокального лазерного сканирующего микроскопа FV10i позволяет расширить границы применения конфокальных методик. Микроскоп FV10i выполняет те же функции, что и высокотехнологичные исследовательские конфокальные сканирующие системы FV1000. В компактный корпус интегрированы все основные компоненты: 4 диодных лазера, спектральный сканирующий детектор, интуитивно понятное программное обеспечение, инкубатор, моторизованный столик, антивибрационная платформа и даже «темная комната». Этот микроскоп идеален для тех, кто только начинает работать с конфокальным методиками, для тех, кто хотел бы освободить исследовательские конфокальные микроскопы от рутинных задач, для диагностических лабораторий, лабораторий с ограниченным бюджетом, для обучающих задач и случаев проведения исследований в условиях ограниченного комфорта, например, на биологических станциях.

Система предназначена для наблюдения за процессами, происходящими на поверхности клетки. Полное отражение внефокусного света позволяет получать изображения клеточной мембраны с непревзойденным разрешением.

Области применения: изучение быстродвижущихся структур, исследование трансмембранного переноса (в том числе транспорта кальция), FRET.

Система

Конфокальный лазерный сканирующий микроскоп, обладающий уникальными характеристиками по чувствительности. 32-канальный спектральный детектор GaAsP имеет квантовую эффективность и соотношение сигнал-шум почти в два раза выше, чем обычные детекторы на основе ФЭУ.

LSM 780 — конфокальный лазерный сканирующий микроскоп, обладающий уникальными характеристиками по чувствительности. 32-канальный спектральный детектор GaAsP имеет квантовую эффективность и соотношение сигнал-шум почти в два раза выше, чем обычные детекторы на основе ФЭУ. Такие выдающиеся характеристики получены благодаря использованию Галлий-Арсенид-Фосфора — полупроводникового материала с идеальными характеристиками для преобразования фотонов в электрический сигнал. Благодаря такой чувствительности вы проводите эксперименты с меньшим временем воздействия на образец и меньшими мощностями лазера, что является ключевым преимуществом в изучении живых клеток.

Благодаря инновационной системе детекции, возможно проведение флуоресцентной корреляционной спектроскопии и подсчет фотонов без дополнительных внешних датчиков. В составе LSM 780 доступен уникальный ультрафиолетовый лазер с длиной волны 355 нм для проведения фотоманипуляций.

Модификация LSM 780 NLO — это лазерный сканирующий микроскоп, оснащенный фемтосекуным мультифотонным лазером генерирующим излучение высокой плотности в инфракрасной области 680-1080 нм. Благодаря свойствам такого лазера, мы можем проникать на глубину до 500 мкм, при этом возбуждение происходит только внутри фокального микрообъема, менее 0,1 мкм3, что позволяет бережно воздействовать на живую ткань.

Технические характеристики:

Сканирующий модуль с 32-канальным GaAsP детектором и двумя ФЭУ (охлаждаемый в красной области спектра);Произвольный выбор спектрального диапазона регистрации сигнала с разрешением до 3 нм (последовательное сканирование) и 10 нм (параллельное сканирование);Детектор проходящего света;Два независимых гальванометрических сканирующих зеркала;Сканирующее разрешение от 4×1 до 6144×6144 пикселей;Скорость сканирования 14×2 скоростей сканирования;8 рамок/сек при 512×512 пикселей, 0.38 мсек/линию из 512 пикселей (2619 линий/сек);Сканирующее увеличение ZOOM от 0.6х до 40х с шагом 0.1х;Свободное вращение на 360° сканирующей рамки;Моторизованный конфокальный pinhole плавной регулировкой диаметра и координат;Разрядность данных — 8, 12 или 16 бит;Лазерные линии — 355, 405, 458, 488, 514, 543, 561, 594, 633, перестраиваемый 488-640;Варианты штативов — инвертированный AxioObserver, прямой AxioImager, прямой с фиксированнм столиком AxioExaminer.

Развитие генной инженерии, протеомики, биотехнологии, современной фармацевтики и биомедицины способствовало быстрому внедрению новых методов конфокальной микроскопии, и в настоящее время они широко используются в клеточной биологии.

Конфокальную флуоресцентную микроскопию можно рассматривать как разновидность традиционной флуоресцентной микроскопии, которая позволяет исследовать внутреннюю микроструктуру клеток, причем не только фиксированных, но и живых, идентифицировать микроорганизмы, структуры клетки и отдельные молекулы, наблюдать динамические процессы в клетках. Конфокальная флуоресцентная микроскопия в дополнение к этому обеспечила возможность трехмерного субмикронного разрешения объекта и существенно расширила возможность неразрушающего анализа прозрачных образцов. Повышение разрешающей способности достигается благодаря использованию в конфокальных микроскопах лазеров в качестве источников света и конфокальной диафрагмы для фильтрации внефокусной флуоресценции. Преимущество лазеров по сравнению с ртутными или ксеноновыми лампами заключается в монохроматичности и высокой параллельности испускаемого пучка света. Эти свойства лазерного излучения обеспечивают более эффективную работу оптической системы микроскопа, уменьшают число бликов, улучшают точность фокусировки пучка света. На образце лазер освещает не все поле зрения, как в ламповом флуоресцентном микроскопе, а фокусируется в точку. Конечно, при этом лазерный луч возбуждает флуоресценцию как в точке фокуса, так и во всех слоях образца, через которые проходит. И если эта внефокусная флуоресценция, излучаемая слоями, расположенными выше и ниже фокальной плоскости, регистрируется вместе с основным сигналом из фокуса объектива, это ухудшает разрешение оптической системы. Избавиться от внефокусной флуоресценции позволяет конфокальная диафрагма. Изменяя диаметр конфокальной диафрагмы, можно определять толщину оптического слоя вблизи фокуса лазерного луча, поэтому флуоресценция, испускаемая выше и ниже фокуса, оказывается дефокусированной на конфокальной диафрагме и не регистрируется. Благодаря этому конфокальная микроскопия обеспечивает улучшенное разрешение, в первую очередь вдоль оси Z.

Современная конфокальная микроскопия позволяет решать три основные задачи: изучение тонкой структуры клетки, колоколизации (пространственного взаиморасположения) в клетке двух или более веществ, а так же исследование динамических процессов, протекающих в живых клетках.

Благодаря улучшенному разрешению, особенно повышенному разрешению по оси Z, и возможности создавать серии «оптических» срезов, конфокальный микроскоп позволяет исследовать тонкую структуру объекта в трехмерном пространстве. Специальные программы позволяют создать из серии оптических срезов объемное изображение объекта (3D) и как бы рассматривать его под разными углами зрения, что может дать ценную информацию о форме клеток, цитоскелете, структуре ядра, хромосомах и даже локализации в них отдельных генов, а так же о взаиморасположении этих элементов.

Использование мультиспектрального (с несколькими флуорохромами) режима работы лазерного сканирующего конфокального микроскопа позволяет исследовать колоколизацию (пространственное взаиморасположение) в клетке двух или более разных веществ, например, белков, помеченных разными флуоресцентными красителями. Исследуя такие препараты в обычном флуоресцентном микроскопе, нельзя с уверенностью утверждать, находятся эти вещества рядом или одно под другим. С помощью метода оптических срезов и дальнейшей 3D-реконструкции объекта можно воссоздать объемное распределение веществ. Мультиспектральный режим так же позволяет проводить на конфокальном микроскопе исследования методом FISH.

Возможность получать временные серии изображений с высоким пространственным разрешением позволяет исследовать изменения, происходящие в клетках и их структурах во времени (4D реконструкция). Кроме того, благодаря наличию лазеров и системы сканирования можно осуществлять не только регистрацию временных изменений, но и осуществлять воздействие на клеточные структуры лазерным излучением с одновременным наблюдением протекающих процессов.

Новые методы лазерной сканирующей конфокальной микроскопии получили широкое распространение в фундаментальных науках, а также все шире применяются в практических исследованиях и диагностической медицине.

Методы конфокальной микроскопии позволяют выявить способность веществ накапливаться в цитоплазме, ядре или других структурах клетки, зарегистрировать образование метаболитов, измерить кинетику накопления и метаболизма веществ в клетке, скорость выведения веществ из клетки, сравнить интенсивность метаболизма в различных клеточных линиях и в различных условиях. Эти методы все шире применяются в исследованиях механизмов действия как канцерогенов, так и лекарственных препаратов и противоопухолевых соединений, позволяют рассчитывать их эффективные концентрации.

Анализ интенсивности и формы спектров собственной флуоресценции позволяет распознавать нормальные и воспаленные клетки, и такой метод, в частности, предложен в качестве нового способа ранней диагностики шейки матки.

Подобрав комбинацию фильтров для нескольких типов собственной флуоресценции, возможно без проведения гистохимического окрашивания и трудоемкого получения и исследования множества срезов различать злокачественные и нормальные тканевые структуры в биопсийных пробах лимфоузлов пациентов с лимфоаденопатией различного происхождения.

Методы конфокальной микроскопии широко применяются в эмбриологии и гидробиологии, ботанике, зоологии при изучении структуры гамет, развития и формирования организмов.

Конфокальная микроскопия постоянно развивается, и в практику внедряются все новые методы исследований для изучения механизмов функционирования организмов на клеточном, субклеточном и молекулярном уровнях, которые с каждым днем становятся все более востребованными в прикладных исследованиях и диагностике. Появление персонального конфокального лазерного сканирующего микроскопа FV10i позволяет расширить границы применения конфокальных методик. Микроскоп FV10i выполняет те же функции, что и высокотехнологичные исследовательские конфокальные сканирующие системы FV1000. В компактный корпус интегрированы все основные компоненты: 4 диодных лазера, спектральный сканирующий детектор, интуитивно понятное программное обеспечение, инкубатор, моторизованный столик, антивибрационная платформа и даже «темная комната». Этот микроскоп идеален для тех, кто только начинает работать с конфокальным методиками, для тех, кто хотел бы освободить исследовательские конфокальные микроскопы от рутинных задач, для диагностических лабораторий, лабораторий с ограниченным бюджетом, для обучающих задач и случаев проведения исследований в условиях ограниченного комфорта, например, на биологических станциях.

Уникальная модульная система: доступен в 23 конфигурациях на основе комбинаций 5 вариантов верхней части микроскопа, 3 штативов и 2 колонн для исследования больших объектов (высота колонны 380 или 560 мм).

Методы — СП, ТП, ФК, ДИК, поляризация, круговая поляризация (С-ДИК), люминесценция;новые источники освещения на основе светодиодов для проходящего и отраженного света (LED) и флуоресцентного анализа (FL-LED и Colibri) с большим временем эксплуатации (15000-30000 ч), позволяющие по- лучать изображения без световых искажений;самонастраиваемая ртутная лампа, HXP 120, галогеновая лампа (12В, 50 Вт);общее увеличение 12,5-2500х;объективы: 1,25х-100х для отраженного и проходящего света: A-Plan, Achroplan, Plan-Neofluar;новый объектив N-Achroplan, рассчитанный для поля зрения 23 мм, изготовленный из экологически чистых материалов, не содержащих свинца;новый объектив EC Epiplan для метода ДИК — один ДИК слайдер подходит сразу для трех объективов с увеличением 5х, 10х, 20х;система дополнительной смены увеличения Optovar (1,6х; 2,5х);насадки — бинокулярная, бинокулярная насадка с фото / видеовыходом; угол наклона окулярных трубок 30°, 20°, 15° (эргономические насадки);револьверное устройство для крепления 6 объективов в различном исполнении: 3 отверстия для ДИК слайдеров, 6 отверстий для ДИК слайдеров;6- или 4-позиционное револьверное устройство смены светоделительных модулей, 2-позиционный слайдер для смены рефлекторных модулей;предметные столики: механический, вращающийся (360°), моторизованный, столик со специальным твердым покрытием;разработанный компанией Carl Zeiss метод C-ДИК (с круговой поляризацией), позволяющий получать дополнительную информацию об объекте;метод ПласДИК (один из методов «рельефного» контрастирования);боковой порт для камеры, устанавливаемый в проходящем свете вместо револьверного устройства смены рефлекторных модулей.

Все микроскопы данного уровня комплектуются под задачи клиента; обращайтесь к специалистам Диаэм.

Визуализирующие системы для любых профессиональных и исследовательских задач.

Методы микроскопии — СП, ТП, ФК, ДИК, поляризация, люминесценция;ручной (A2/D2) и моторизованный (M2/Z2) варианты управления микроскопом;IC2S-оптика, скорректированная на бесконечность, высокого контраста, разрешения и цветовой коррекции;система освещения проходящего света — галогеновая лампа (12В, 100 Вт), блок питания внешний (M2 и Z2) и внутренний (A2 и D2); принцип Келле-ра, светодиод LED; менеджер света;конденсоры — Аббе, ахроматический, ахроматический апланатический, универсальный для СП и ТП (сухой и иммерсионный), универсальный для СП, ТП, ФК, ДИК;модуль для флуоресцентного анализа — ртутная лампа с саморегулировкой HBO103 (100 Вт), 6-или 10- позиционное револьверное устройство смены светоделителей;окуляры: 10х/20; 10х/23; 16х/16.

Все микроскопы данного уровня комплектуются под задачи клиента; обращайтесь к специалистам Диаэм.

Методы исследования — СП, ФК;объективы План Ахромат 4х, 10х, 40х, 100х МИ (для ФК);4-х гнездная револьверная головка, ориентированная внутрь;предметный столик 140×135 мм, диапазон перемещения 75×30 мм; препаратодержатель на два предметных стекла;конденсор АББЕ со встроенной aппepтуpной иpиcoвой диaфpaгмой;галогеновая лампа 6 В — 30 Вт с регулятором или LED 6 В — 3 Вт (что соответствует яркости галогенной лампы на 20 Вт);окуляры 10x с FN 18 мм или FN 20 мм;габариты, ГхШхВ, мм — 409,3×186×397,3;вес нетто, кг — 9,6.

Аксессуары и опции:

деревянный ящик для транспортировки;ФК вставка, конденсор ФК и объективы;темнопольная вставка;адаптер для цифровой камеры;цифровая камера.

Методы исследования — СП, Фл.;бинокулярный тубус;объективы План Ахромат 4х, 10х, 40х, 100х МИ (для ФК, ТП);4-х гнездная револьверная головка, ориентированная внутрь;предметный столик 140×135 мм, диапазон перемещения 75×30 мм; препаратодержатель на два предметных стекла;конденсор АББЕ со встроенной aппepтуpной иpиcoвой диaфpaгмой;светодиодное освещение — светодиод белого света LED 6 В — 3 Вт, голубого света LED 455 нм, 6 В — 3 Вт, отраженный свет для исследования флуоресценции;быстрое переключение с Фл на метод СП;экономическая эффективность светодиодной концепции;аккумуляторный комплект для автономной работы;специальные наглазники;окуляры 10x с FN 18 мм;габариты, ГхШхВ, мм — 409,3×434,7×470,8;вес нетто, кг — 9,6.

Аксессуары и опции:

деревянный ящик для транспортировки;ФК вставка, конденсор ФК и объективы;блок флуоресценции (флуоресцентный осветитель с ртутной лампой мощностью 50 Вт снабжен центрируемой полевой диафрагмой, портом для нейтральных светофильтров и двухпозиционным слайдером для фильтровых кубов; предлагаются кубы УФ, синего, зеленого или желтого освещения;темнопольная вставка;адаптер для цифровой камеры;цифровая камера.

Поставляются в 10 фиксированных конфигурациях;методы исследования — СП, ТП, ФК;бинокулярный или тринокулярный тубус;объективы План Ахромат 4х, 10х, 40х, 100х МИ (для ФК, ТП);4-х гнездная револьверная головка, ориентированная внутрь;предметный столик 140×135 мм, диапазон перемещения 75×30 мм; препаратодержатель на два предметных стекла;конденсор АББЕ со встроенной aппepтуpной иpиcoвой диaфpaгмой;галогеновая лампа 6 В — 30 Вт с регулятором или LED 6 В — 3 Вт (что соответствует яркости галогенной лампы на 20 Вт);окуляры 10x с FN 18 мм или FN 20 мм;габариты, ГхШхВ, мм — 409,3×186×397,3;вес нетто, кг — 9,6.

Аксессуары и опции:

деревянный ящик для транспортировки;ФК вставка, конденсор ФК и объективы;темнопольная вставка;адаптер для цифровой камеры;цифровая камера.

Методы исследования — СП;объективы План Ахромат 4х, 10х, 40х, 100х МИ;бинокулярный тубус;4-х гнездная револьверная головка, ориентированная внутрь;предметный столик 140×135 мм, диапазон перемещения 75×30 мм; препаратодержатель на два предметных стекла;левостороннее уаправление;конденсор АББЕ со встроенной aппepтуpной иpиcoвой диaфpaгмой;галогеновая лампа 6 В — 30 Вт с регулятором или LED 6 В — 3 Вт (что соответствует яркости галогенной лампы на 20 Вт);окуляры 10x с FN 18 мм или FN 20 мм;габариты, ГхШхВ, мм — 409,3×186×397,3;вес нетто, кг — 9,6.

Аксессуары и опции:

деревянный ящик для транспортировки;ФК вставка, конденсор ФК и объективы;темнопольная вставка;адаптер для цифровой камеры;цифровая камера.

Методы исследования — СП;объективы План Ахромат 4х, 10х, 40х, 100х МИ;бинокулярный тубус;4-х гнездная револьверная головка, ориентированная внутрь;предметный столик 140×135 мм, диапазон перемещения 75×30 мм; препаратодержатель на два предметных стекла;конденсор АББЕ со встроенной aппepтуpной иpиcoвой диaфpaгмой;галогеновая лампа 6 В — 30 Вт с регулятором или LED 6 В — 3 Вт (что соответствует яркости галогенной лампы на 20 Вт);окуляры 10x с FN 18 мм;габариты, ГхШхВ, мм — 409,3×186×397,3;вес нетто, кг — 9,6.

Аксессуары и опции:

деревянный ящик для транспортировки;ФК вставка, конденсор ФК и объективы;темнопольная вставка;адаптер для цифровой камеры;цифровая камера.