О компании>>Услуги>>Адаптация микрорастений in vitro к условиям за­щи­щен­ного грун­та

Адаптация микрорастений in vitro к условиям за­щи­щен­ного грун­та

Адаптация микрорастений in vitro к условиям за­щи­щен­ного грун­та

Разработанная нами технология позволяет получать саженцы растений, свободных от вирусов и других патагенов, представителей уникальных сортов по доступным ценам.

 

 

 

 

 

Возможность размножения тех культур, которые в природе вегетативно не размножаются, является выдающимся достижением науки конца ХХ века. Широкий спектр открытых растительных гормонов роста и физиологически активных соединений предоставили возможность чрезвычайно гибкого манипулирования растительными тканями в искусственных условиях. Технология культивирования in vitro растительных тканей с успехом используется в генной инженерии, для биохимических и физиологических исследований и во многих других областях науки.

 


Неоспоримым преимуществом микроразмноженных растений является их генетическая однородность, более высокая физиологическая выравненность, высокий коэффициент размножения; ускорение перехода растений к репродуктивной фазе развития; отсутствие сезонности при производстве; возможность автоматизации процесса выращивания и др.

 

На основании разработанного нами ранее технологического регламента ускоренной адаптации микрорастений к условиям защищенного грунта, мы получили экспериментальные образцы посадочного материала ясеня и сирени.

 

Уход за растениями

Первоначальный уход за растениями заключается в поддержании влажности воздуха и своевременном поливе, в особенности краевых лунок кассет, где пересыхание наиболее заметно. Затем начинали планомерно снижать влажность воздуха в парниках. Слишком раннее начало проветривания пагубно сказывается на частоте приживаемости растений, а более позднее приводит к затягиванию процесса адаптации.

После прохождения растениями акклиматизации к условиям внешней среды, что проявлялось в более медленном увядании при проветривании парников и начале роста апикальной части побега, начинаем производить подкормку. Через 2 месяца адаптации экспериментальные образцы посадочного материала сирени готовы к пересадке в более крупные емкости.

Результаты работ по экспериментальному получению посадочного материала показали, что разработанный ранее технологический регламент ускоренной адаптации микрорастений обеспечивает стабильное получение качественного посадочного материала в более сжатые сроки.

 

На основании разработанного нами ранее технологического регламента ускоренной адаптации микрорастений ясеня и сирени к условиям защищенного грунта, мы получили экспериментальные образцы посадочного материала ясеня и сирени.

Результаты работ по экспериментальному получению посадочного материала сирени и ясеня продемонстрировали, что разработанный технологический регламент ускоренной адаптации обоих анализируемых видов растений обеспечивает стабильное получение качественного посадочного материала в более сжатые сроки.

 

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

 

  1. Лебедев, В.Г. Микроразмножение и регенерация адвентивных побегов ясеня обыкновенного (Fraxinus excelsior L.) в культуре in vitro / В.Г. Лебедев, И.И. Концевая, В.Е. Падутов, К.А. Шестибратов // Проблемы лесоведения и лесоводства: сборник научных трудов ИЛ НАН Беларуси / Институт леса НАН Беларуси. – 2008. – Вып. 68. – С. 239-244.
  2. Azcon-Aguilar, C., M. Cantos, A. Troncoso, and J.M. Barea. (1997). Beneficial effect of arbuscular mycorrhizas on acclimatization of micropropagated cassava plantlets. Scientia Hort. 72:63-71.
  3. Beruto M., Lanteri L. and Portogallo C. (2004) Micropropagation of tree peony (Paeonia suffruticosa) Plant Cell, Tissue and Organ Culture, Volume 79, Number 2, 249-255
  4. Brutti, C.B. Rubio E.J., Llorente B.E. and Apóstolo N.M. (2002) Artichoke Leaf Morphology and Surface Features in Different Micropropagation Stages Biologia Plantarum Volume 45, Number 2, 197-204
  5. De Klerk, G-J. (2000) Rooting treatment and the ex-vitrum performance of micropropagated plants. Acta Hort. 530:277-288.
  6. De Klerk, G-J. (2002) Rooting of microcuttings: Theory and practice. In vitro Cell Dev. Biol.Plant 38:415-422.
  7. Diaz-Perez, J.C., E.G. Sutter, and K.A. Shackel. (1995) Acclimatization and subsequent gas exchange, water relations, survival and growth of microcultured apple plantlets after transplanting them in soil, Physiol. Plant. 95 225–232.
  8. Donelly D & Tisdall L (1993) In: Micropropagation of Woody Plants.EditedbyMR
  9. Fuentes, G.; Talavera, C.; Oropeza, C.; Desjardins, Y.; Santamaria, J. M. (2005) Exogenous sucrose can decrease in vitro photosynthesis but improve field survival and growth of coconut (Cocos nucifera L.) in vitro plantlets. In Vitro Cell. Dev. Biol.—Plant 41:69–76;.
  10. Grout, B. W. W.; Millam, S. (1985) Photosynthetic development of micropropagated strawberry plantlets following transplanting. Ann. Bot. 55:129–131;
  11. Hazariki, B.N., V.A. Parthasarathy, and V. Nagaraju. (2002) Action of paclobutrazol in acclimatizing micropropagated citrus plantlets. Indian J. Agric. Res. 36:57-60.
  12. Iliev, Gajdosova, A., Libiakova G. and Shri Mohan Jain. (2010) Plant Micropropagation. In Plant Cell Culture Edited by Michael R. Davey and Paul Anthony.
  13. Kim M.-S., Schumann C.M., Klopfenstein N.B. 1997. Effects of thidiazuron and benzyladenine on axillary shoot proliferation of three green ash (Fraxinus pennsylvanica Marsh.) clones. Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 48:45–52.
  14. Kozai, T., Iwanami, Y. (1988) Effect of CO2 enrichment and sucrose concentration under high photon fluxes on plantlet growth of carnation (Dianthus caryophyllus L.) in tissue culture during preparation stage. - J. jap. Soc. hort. Sci. 57: 279-288.
  15. Nguyen Q.T. and Kozai T. (2001) Growth of In vitro Banana (Musa Spp.) Shoots under Photomixotrophic and Photoautotrophic Conditions. In Vitro Cellular & Developmental Biology. Plant. Vol. 37, No. 6, pp. 824-829
  16. Pospíšilová, J., Solárová, J., Čatský, J. (1992) Photosynthetic responses to stresses during in vitro cultivation. - Photosynthetica 26: 3-18.
  17. Preece, J.E., Sutter, E.G. (1991) Acclimatization of micropropagated plants to the greenhouse and field. - In: Debergh, P.C., Zimmerman, R.H. (ed.): Micropropagation. Technology and Application. Pp. 71-93. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht - Boston - London.
  18. Swain S.S., Tripathy T., Mohapatra P.K. and Chand P.K. (2010) Photosynthetic and transpiration responses of in vitro-regenerated Solanum nigrum L. plants to ex vitro adaptation. In Vitro Cellular & Developmental Biology – Plant. Volume 46, Number 2, 134-141
  19. Thomas P. (1999) Relationship between tissue growth, CO2 level and tendril formation during in vitro culture of grape (Vitis vinifera L.) Vitis 38(1), 25-29
  20. Van Huylenbroeck, J.M., Piqueras, A., Debergh, P.C. (1998) Photosynthesis and carbon metabolism in leaves formed prior and during ex vitro acclimatization of micropropagated plants. - Plant. Sci. 134: 21-30.
  21. Wetzstein, H.Y., Sommer, H.E. (1982) Leaf anatomy of tissue-cultured Liquidambar styraciflua (Hamamelidaceae) during acclimatization. - Amer. J. Bot. 69: 1579-1586.
  22. Zaid, A., Hughes, H. 1995. Water loss and polyethylene glycol-mediated acclimatization of in vitro-grown seedlings of 5 cultivars of date palm (Phoenix dactylifera L.) plantlets.  Plant Cell Rep. 14: 385-388.